如何讓巴氏染色液的使用性能完全發揮出來
巴氏染色液附著力更強、更潔凈、保質期更長，粘貼牢固, 透明度好。能夠滿足各類組織、細胞等不同樣本、不同后續處理的粘附力及防脫要求。可快速、牢固的吸附組織和細胞；制片過程中吸附的細胞數量較多、分布均勻，耐受固定、染色、脫水、洗滌及其他藥物等的各項處理，使粘附的細胞及組織在后續的處理過程中不易脫落或局部掉片，具有很好的制片效果；在濕潤的條件下也適用于處理易漂浮細胞。
巴氏染色液用于核酸的提取、富集、純化等步驟。其處理后的產物用于臨床體外檢測使用。用于多肽、蛋白質的提取、富集、純化等步驟。其處理后的產物用于臨床體外檢測使用。用于終止酶標二抗與底物液的熒光反應，完成基于免疫原理的體外診斷檢測，僅用于，僅用于確定的檢測系統。
巴氏染色液的如何應，是先將固定后的涂片入水、蘇木精染核、鹽酸酒精分化、返藍同HE染色。70%、80%、95%酒精逐級脫水各：1分鐘。橙黃-G6 3-5分鐘。95%酒精I、Ⅱ缸洗各1分鐘。EA36或EA50 5分鐘。95%酒精I、II缸洗各1分鐘。無水酒精I、Ⅱ缸洗各1分鐘。二甲苯I、Ⅱ缸透明各1。中性樹膠封固。
如何讓巴氏染色液為：
細胞核著色不佳，細胞核著色過淺，鹽酸分化時間過長或 蘇木素染液時間過長。需要縮短分化時間或延長堿化時間；每日加入少量新鮮 蘇木素染液或重新配制蘇木素液。在固定之前制片干燥。所以對巴氏染色的制片需要嚴格遵守濕固定的原則。自來水的PH值偏酸性。使用堿性溶液。
細胞核著色過深，鹽酸溶液濃度不夠。適當加入幾滴鹽酸以增加濃度。制片用高于95%以上濃度的 酒精固定后可以出現染色過深。應用95%酒精固定。
細胞漿著色不佳，如果全片內胞漿都淡染，則需要延長染色時間或更換新液。如果胞漿不分色，均為淺紅色。制片在固定前干燥或制片被有大量球菌樣細菌影響胞漿染色。此情況可以適當增加染色時間能夠部分糾正不分色狀況。胞漿染成灰色或紫色，是由于 蘇木素染色時間過長或鹽酸分化不佳。經過褪色后重新 蘇木素可以糾正。由于標本的不同，同樣配方的EA染液可造成偏藍、偏綠和偏紅，對不同的標本應該使用不同的EA染液。一般認為，EA36和EA50用于婦科標本，而EA65或改良EA用于非婦科標本。
